本文主要是介绍项目文章｜真菌ChIP-seq+RNA-seq解析脱落酸生物合成的调控机制，希望对大家解决编程问题提供一定的参考价值，需要的开发者们随着小编来一起学习吧！
组蛋白翻译后修饰是表观遗传调控的主要机制之一，已被证明在基因表达的调控中发挥重要作用，参与真菌发育、感染相关的形态发生、环境应激反应、次级代谢产物的生物合成和致病性。我们分享过不少真菌组蛋白修饰的文章，今天接着带来一篇利用ChIP-seq解析真菌脱落酸生物合成机制的文章。
2024年3月4日，中国科学院成都生物研究所谭红研究员课题组在期刊Frontiers in Microbiology发表文章《Normal distribution of H3K9me3 occupancy co-mediated by histone methyltransferase BcDIM5 and histone deacetylase BcHda1 maintains stable ABA synthesis in Botrytis cinerea TB-31》。该研究以灰葡萄孢（Botrytis cinerea）为研究对象，发现H3K9甲基转移酶BcDIM5与H3K14去乙酰化酶BcHda1物理相关，缺失这两者会严重影响ABA合成。RNA-seq和ChIP-seq的联合分析揭示了BcDIM5和BcHda1缺失导致H3K9me3修饰的正态分布和水平出现显著的全局缺陷。研究结论认为ABA基因簇由BcDIM5和BcHda1共同调控，对B. cinerea TB-31 ABA基因簇H3K9me3的正态分布至关重要。这项工作扩展了我们对ABA生物合成复杂调控网络的理解，为高产ABA菌株的遗传改良提供了理论基础。爱基百客为该研究提供ChIP-seq的技术支持。
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研究背景
脱落酸（ABA）是一种保守且重要的“倍半萜烯信号分子”，广泛分布在不同生物体中，具有独特的生物学功能。ABA可以协调微生物和宿主之间的互惠和竞争关系。此外，ABA还调节植物和动物的免疫和应激反应。因此，ABA在农业、医药及相关领域有着广泛的应用。作为ABA生产模型菌株，植物病原性子囊菌Botrytis cinerea已被广泛研究。然而，关于Botrytis cinerea中ABA生物合成调控机制的研究相对较少。
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研究路线
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研究结果
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BcDIM5是灰葡萄孢TB-31生产ABA所必需的
在之前的研究中，作者发现全局调控因子BcLae1的敲低显著降低了ABA的产生，并改变了H3K9me3的整体修饰。于是，作者推测H3K9me3修饰的变化是否对ABA的合成有影响。基于此，作者敲除了灰葡萄孢TB-31的H3K9甲基转移酶BcDIM5。研究结果表明，敲除突变体的ABA产量大幅下降（减少 97%）（图1）；而在Bcdim5互补后，ABA的产量得以恢复。这些结果证明了BcDIM5参与了ABA合成的调控。
当Bcdim5被敲除时，ABA的合成从早期到后期严重减少。为了了解Bcdim5基因敲除对ABA合成相关途径的影响，作者选择了ABA合成的早期阶段进行RNA-seq分析。对差异表达基因进行分析，共获得1002个DEGs，其中上调基因769个，下调基因233个（图 1B）。
图1：灰葡萄孢TB-31生产ABA需要Bcdim5。
随后，作者专注于分析与ABA合成相关途径的表达变化，包括碳水化合物运输和利用、乙酰辅酶A合成和运输相关途径、FPP合成和ABA合成基因簇。相关基因的表达水平有减少的，也有没有变化的。基于此，作者发现ΔBcdim5中ABA产量的减少不能归因于乙酰辅酶a的合成和转运。此外，参与MVA通路的酶的转录水平保持不变，而ABA合成基因簇（Bcaba1、Bcaba2、Bcaba3和Bcaba4）的转录水平显著降低。因此，作者认为这是导致ΔBcdim5中ABA产量降低的直接原因，这一观点经RT-qPCR证实。
2. 组蛋白去乙酰化酶BcHda1与BcDIM5相互作用，参与ABA合成的调控
利用生信分析，作者推测BcHda1是BcDIM5的潜在相互作用蛋白。利用酵母双杂交、GST-pulldown证明了它们之间的互作关系。随后，作者将Bchda1敲除。突变体ΔBchda1的ABA产量与ΔBcdim5相似。同样地，利用RNA-seq分析来评估Bchda1敲低对ABA合成途径的影响。结果显示，除了ABA合成基因簇的转录水平显著下降（图2E）外，其他相关通路的表达变化都没有，这表明BcDIM5和BcHda1通过调节ABA基因簇的转录水平来影响ABA的合成。比较分析ΔBchda1和ΔBcdim5突变体的RNA-seq数据，DEGs数据的重叠表明，这两种蛋白具有协同作用，发挥调节功能。
图 2：BcDIM5的相互作用蛋白BcHda1也参与了ABA的合成
3. 过表达Bcdim5和Bchda1并没有增加灰葡萄孢TB-31中ABA的产生
构建Bcdim5和Bchda1超表达突变体，并检测其ABA产量。同样，对超表达突变体进行RNA-seq分析。过表达Bcdim5和Bchda1并没有增加灰孢杆菌TB-31中ABA的产量。基于这部分的结果，作者认为Bcdim5和Bchda1的适当表达水平是维持ABA合成稳定的重要因素。
图 3：过表达Bcdim5和Bchda1并没有增加葡萄灰霉病菌TB-31中ABA的产量。
4. BcHda1和BcDIM5对于H3K9me3占用率的正态分布至关重要
由于BcDIM5是组蛋白H3K9甲基转移酶，而BcHda1可能是组蛋白H3K14去乙酰化酶，它们的缺失和过表达将不可避免地影响染色质整体修饰状态的改变。结果表明，在Bcdim5和Bchda1突变体中，H3K9me和H3K9me2没有明显变化。然而，在ΔBchda1和ΔBcdim5中，H3K9me3的修饰水平显著降低。基因互补后修饰水平的恢复表明，BcDIM5和BcHda1在调控H3K9me3的整体修饰水平中发挥了一定作用。因此，作者推测，H3K9me3整体修饰状态的改变是调控Bcdim5和Bchda1突变体共享的DEGs的主要因素。同时，研究发现Bchda1过表达导致了H3K14ac整体修饰水平的降低。结果表明，BcHda1作为组蛋白H3K14去乙酰化酶，从而影响H3K14ac的整体修饰水平（图4A，B）
H3K9me3和H3K14ac在真菌发育、毒力和次级代谢产物中发挥着至关重要的作用，前者通常与基因抑制相关，后者与基因激活相关。为了更深入地了解Bchda1和Bcdim5缺失对菌株H3K9me3和H3K14ac占用率的影响，作者通过ChIP-seq绘制了这些修饰在ΔBcdim5和ΔBchda1突变体中的基因组分布，以灰葡萄孢TB-31作为背景对照。结果显示，与TB-31相比，ΔBcdim5中的H3K14ac水平几乎没有变化。相比之下，与TB-31相比，ΔBchda1的H3K14ac占用率更高。然而，仅鉴定出105个基因对应的128个H3K14个差异峰，表明富集区占整个基因组的极小比例。这说明Bchda1的缺失对全局H3K14ac的影响相对较小。值得注意的是，与TB-31相比，ΔBchda1和ΔBcdim5突变体的H3K9me3占用率分布均存在显著不足。
ΔBchda1中998个基因和ΔBcdim5中1191个基因的H3K9me3水平至少降低了1倍。BcHda1和BcDIM5共同介导的H3K9me3去除位点分布在注释基因的不同区域，包括外显子、启动子、内含子和基因间区域，外显子和启动子的比例占比较大（图4C）。Meta-gene分析也显示ΔBcdim5和ΔBchda1菌株的H3K9me3水平下降，特别是在TSS和TES区域之间（图4D）。另外，在ΔBchda1和ΔBcdim5株中，254个基因和80个基因分别被H3K9me3占据，而在TB-31中缺失。总的来说，BcDIM5和BcHda1的缺失导致了H3K9me3修饰正态分布和水平的严重整体缺陷，包括大部分缺失丢失和减少，以及基因组位点的局部高甲基化。
图4：Bcdim5和Bchda1对于灰葡萄孢TB-31中全基因组H3K9me3占据的正态分布至关重要
5. BcHda1和BcDIM5的缺失可重编程H3K9me3占据的基因表达
为了进一步比较H3K9me3在ΔBcdim5和ΔBchda1菌株之间的分布，作者定量分析了H3K9me3占据Peak关联的基因数量。研究共鉴定出2846个H3K9me3占据峰（ΔBcdim5 vs TB-31），对应ΔBcdim5中的1964个基因；2069个峰（ΔBchda1 vs TB-31）对应ΔBchda1中的1539个基因。其中，809个基因有重叠的H3K9me3占据峰（图4E），说明这些基因的H3K9me3富集区的修饰可能受到BcHda1和BcDIM5的共同调控。随后，作者探讨了BcHda1和BcDIM5在基因抑制过程中的生物学联系。
RNA-seq分析表明，ΔBcdim5和ΔBchda1菌株的DEGs具有相同的失调方向，且上调基因（611个上调基因）存在显著重叠。同时，上调的交集中有193个基因，在ΔBcdim5和ΔBchda1菌株中缺少或减少了H3K9me3修饰，表明BcDIM5和BcHda1对这些基因的转录沉默是必需的（图4F）。此外，上调的交叉集中有158个基因与H3K9me3删除峰区域相邻，这表明H3K9me3的扩散可能对基因的抑制是必需的。这些结果表明BcDIM5和BcHda1对B. cinerea TB-31中H3K9me3介导的转录沉默至关重要。为了更深入地了解BcDIM5和BcHda1对B. cinerea TB-31的全基因组H3K9me3修饰的特征，使用HOMER软件预测和分析了H3K9me3占据峰的motif。结果显示，丰度最高的基序是GTTGTNG，其次是GTCCTC，GCCCTT和GGCGA等（图4G）。H3K9me3在这些motif上的结合可能需要BcDIM5和BcHda1的共同参与。
由BcDIM5和BcHda1引起的组蛋白修饰变化也影响了B. cinerea的次级代谢物（SM）关键酶基因的转录水平。在ΔBcdim5中，Bcstc1、Bcstc3、Bcpks11、Bcpks17和Bcpks21基因的转录水平降低，而Bcstc4、Bcpks1、Bcpks10和Bcpks14基因的转录水平增加。结合ChIP-seq分析，观察到ΔBcdim5在Bcstc3的外显子区域中H3K9me3占据增加，而在Bcpks1和Bcpks10的外显子区域中H3K9me3占据减少（图5A-D）。此外，在Bchda1-OE-X24菌株中，五个聚酮合酶Bcpks6、Bcpks9、Bcpks11、Bcpks1和Bcpks21基因的转录水平均增加。ChIP-qPCR分析显示Bcpks6和Bcpks21基因的启动子区域中H3K14ac占据增加，这可能解释了观察到的转录上调。由BcDIM5和BcHda1引起的组蛋白修饰重编程促进了B. cinerea中新型次生代谢产物的进一步挖掘。
图5：由于Bcdim5确实导致差异H3K9me3占据，从而改变了SM相关基因的表达。
6. BcHda1和BcDIM5的缺失导致ABA基因簇的H3K9me3超甲基化
目前的研究表明，H3K9me3通常与生物合成基因簇的抑制有关，并被进一步确定为组成型异染色质的标记，主要与着丝粒异染色质相关。因此，在病原真菌中敲除DIM5会导致一些次生代谢产物的产量增加。然而，DIM5通常与该菌株的致病性有关。DIM5的丢失伴随着菌株生长发育缓慢、毒性减弱，毒力因子合成减少，这也发生在灰葡萄孢B. cinerea中。在ΔBcdim5和ΔBchda1突变体中，毒力因子ABA的产生严重受损。对TB-31、ΔBcdim5和ΔBchda1中ABA基因簇的H3K14ac和H3K9me3富集情况进行IGV分析，发现H3K14ac修饰无显著性差异。
出乎意料的是，Bcdim5和Bchda1的缺失并没有导致ABA基因簇中H3K9me3占用率的减少，而是导致H3K9me3的过度富集（图6A）。随后，利用ChIP-qPCR进一步验证了H3K9me3在Bcaba1和Bcaba3基因的启动子区和外显子区的占用率显著增加（图6B），这进而导致了整个基因簇的表达下调。需要进一步调查这种超级H3K9me3修饰的产生是否是由于Bcdim5和Bchda1的删除导致其他组蛋白修饰酶被招募到ABA基因簇中。然而，毫无疑问，BcDIM5和BcHda1对ABA合成是必需的。同时，作者还发现BcDIM5和BcHda1并未通过电泳迁移位移实验直接结合到ABA基因簇的启动子区域。因此，作者认为其他蛋白质协助BcDIM5和BcHda1对ABA基因簇的H3K9me3修饰（图6C）。
图6：ABA基因簇表达水平的降低与H3K9me3占用率的增加有关。
除了ABA基因簇外，作者还对另外两个已知的毒力因子（BOT和BOA）进行了分析。RNA-seq数据显示，ΔBchda1菌株中BOA和BOT基因簇的表达水平保持不变。然而，在ΔBcdim5菌株中，Bcboa3、Bcboa15、Bcboa16、Bcboa17以及整个BOT基因簇（Bcbot1-5）的表达水平下调。IGV显示在ΔBcdim5菌株中，Bcboa3、Bcboa15和Bcboa16基因的外显子和启动子区域中H3K9me3占据增加，这可能导致表达下调（图7A-D）。值得注意的是，BOT基因簇在H3K9me3占据上没有显示出显著变化，因此作者推测Bcdim5的敲低间接导致了整个簇的转录水平下调。Bcdim5和Bchda1的删除破坏了一些毒力因子（ABA、BOA）的正常翻译后修饰，这也反映了毒力因子调控网络的复杂性。结合以上研究分析，作者得出结论：ABA基因簇受BcDIM5和BcHda1共同调控，它们对B. cinerea TB-31 ABA基因簇H3K9me3的正态分布和维持至关重要。
图7: BOA基因簇表达水平的降低与H3K9me3占用率的增加相关
总 结
研究结果确定了H3K9甲基转移酶BcDIM5和H3K14去乙酰化酶BcHda1之间的物理联系，揭示了它们在ABA生物合成中的调控作用。BcDIM5和BcHda1在B. cinerea TB-31中H3K9me3占据的正态分布和次生代谢产物稳定合成中发挥着关键作用。据作者所知，这是关于组蛋白修饰参与B. cinerea ABA生物合成的首次报道。这项工作为进一步改良高产ABA菌株提供了理论基础，并为在B. cinerea中发现和生产未知次生代谢产物提供了新的启示。
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微生物表观经验部分汇总
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