NECAT: Nanopore数据的高效组装工具

本文主要是介绍NECAT: Nanopore数据的高效组装工具，希望对大家解决编程问题提供一定的参考价值，需要的开发者们随着小编来一起学习吧！

NECAT是肖传乐老师团队开发的一个针对Nanopore数据组装的软件，目前该工具尚未发表，除了https://github.com/xiaochuanle/NECAT有软件的介绍外，暂时没有中文资料介绍NECAT的使用。

太长不看的结论: Nanopore的组装推荐用下NECAT。组装之后是先用MEDAKA做一遍三代polish，然后用NextPolish默认参数做二代polish。

这篇将会以一篇发表在Nature Communication上的拟南芥nanopore数据介绍如何使用NECAT进行组装，运行在CentOS Linux release 7.3.1611 (Core)，64G为内存， 20线程(Intel(R) Xeon(R) CPU E5-2640 v4 @ 2.40GHz)，下面是正文。

软件安装

NECAT可以在https://github.com/xiaochuanle/NECAT/releases/页面获取最新的软件下载地址，这里下载的是0.01版本。

wget https://github.com/xiaochuanle/NECAT/releases/download/v0.01/necat_20190307_linux_amd64.tar.gz
tar xzvf necat_20190307_linux_amd64.tar.gz
export PATH=$PATH:$(pwd)/NECAT/Linux-amd64/bin

目前0.01版本不支持gz文件作为输入，但后续版本应该会支持。

实战

第一步: 新建一个分析项目

mkdir NECAT && cd NECAT

以发表在NC上的拟南芥数据为例, 下载该数据

# 三代测序
wget ftp://ftp.sra.ebi.ac.uk/vol1/fastq/ERR217/003/ERR2173373/ERR2173373.fastq.gz
seqkit seqkit fq2fa ERR2173373.fastq.gz | gzip -c > ERR2173373.fasta

第二步: 创建配置文件

necat.pl config ath_config.txt

配置文件中，主要修改如下几个参数

PROJECT=athaliana #项目名
ONT_READ_LIST=read_list.txt #read所在路径文件
GENOME_SIZE=120000000 #基因组大小
THREADS=20 # 线程数
MIN_READ_LENGTH=3000 # 最短的read长度
CNS_OUTPUT_COVERAGE=45 # 用于组装的深度

参数中还有一个，NUM_ITER=2，它并非是简单的重复2次纠错，它的每一轮的校正目的其实不同，第一轮的优先级是敏感度(senstitive)，第二轮之后主要追求速度(fast)。

除了上面的配置参数外，其他参数可以不需要修改，使用默认的值即可。需要修改的话，参考最后的参数说明部分。

第三步: 序列纠错

necat.pl correct ath_config.txt &

纠错后的reads在athaliana/1-consensus/cns_final.fasta

cns_finla.fasta的统计信息会输出在屏幕中，或者自己用fsa_rd_stat也能得到同样的结果

Count: 206342
Tatal: 3102480870
Max: 112992
Min: 1010
N25: 31940
L25: 18989
N50: 21879
L50: 48506
N75: 13444
L75: 93215

此外我还用time获取了运行时间，纠错花了大概一个小时。

real    55m31.451s
user    815m32.801s
sys     7m55.039s

第四步: contig组装

necat.pl assemble ath_config.txt &

结果在athaliana/4-fsa/contigs.fasta

关于contigs.fata统计信息会输出在屏幕上，同样用fsa_rd_stat 也可以。

Count: 162
Tatal: 122293198
Max: 14562810
Min: 1214
N25: 13052494
L25: 3
N50: 9503368
L50: 5
N75: 4919866
L75: 10

时间用了75分钟

real    74m53.127s
user    1308m29.534s
sys     12m5.032s

第五步: contig搭桥

necat.pl bridge ath_config.txt

结果在athaliana/6-bridge_contigs/bridged_contigs.fasta

Count: 127
Tatal: 121978724
Max: 14562810
Min: 2217
N25: 13193939
L25: 3
N50: 11146374
L50: 5
N75: 5690371
L75: 9

从N50和N75可以看出这一步会提高组装的连续性。

组装结果polish

对Nanopore组装结果进行polish的常用软件有下面3个

Medaka
nanopolish
racon

由于拟南芥的基因组比较小，我分别用了Medaka和racon对输出结果进行polish(因为没有原始信号数据，因此nanopolish用不了)，代码如下

Medaka

NPROC=20
BASECALLS=ERR2173373.fasta
DRAFT=athaliana/6-bridge_contigs/bridged_contigs.fasta
OUTDIR=medaka_consensus
medaka_consensus -i ${BASECALLS} -d ${DRAFT} -o ${OUTDIR} -t ${NPROC} -m r941_min_high

三轮Racon:

gzip -dc ERR2173373.fastq.gz  > ERR2173373.fastq
minimap2 -t 20 ${DRAFT} ERR2173373.fastq > round_1.paf 
racon -t 20 ERR2173373.fastq round_1.paf ${DRAFT} > racon_round1.fasta
minimap2 -t 20 racon_round1.fasta ERR2173373.fastq > round_2.paf 
racon -t 20 ERR2173373.fastq round_2.paf racon_round1.fasta> racon_round2.fasta
minimap2 -t 20 racon_round2.fasta ERR2173373.fastq > round_3.paf
racon -t 20 ERR2173373.fastq round_3.paf racon_round2.fasta> racon_round3.fasta

在后续评估质量的时候，我发现单纯用三代polish的结果还不是很好，因此我用他们提供的二代测序，用NextPolish对NECAT的结果进行polish。

# 二代测序
prefetch ERR2173372
fasterq-dump -O  . ERR2173372

run.cfg内容如下, 其中sgs.fofn记录的就是解压后的ERR2173372_1.fastq和ERR2173372_2.fastq的路径

[General]                
job_type = local  
job_prefix = nextPolish  
task = 1212 
rewrite = no 
rerun = 3
parallel_jobs =  8  
multithread_jobs = 20 
genome = input.fasta 
genome_size = auto 
workdir = ./nextpolish 
polish_options = -p {multithread_jobs}
[sgs_option]             
sgs_fofn = ./sgs.fofn 
sgs_options = -max_depth 100 -bwa

我考虑了两种情况，一种是直接用二代polish，另一种是三代polish之后接二代polish。

结果评估

在计算时间上，我之前用Canu跑了相同的数据，设置原始错误率0.5，纠错后错误率为0.144，用3个节点（每个节点12个线程），运行了3天时间，但是NECAT只需要3个小时左右就能完成相同的分析，这个速度差异实在是太明显了。

用Minimap2 + dotPlotly绘制CANU，NECAT和拟南芥参考基因组的共线性图

minimap2 -t 20 -x asm5 Athaliana.fa NECAT.fa > NECAT.paf
pafCoordsDotPlotly.R  -i NECAT.paf -o NECAT  -l -p 10 -k 5
minimap2 -t 20 -x asm5 Athaliana.fa CANU.fa > CANU.paf
pafCoordsDotPlotly.R  -i CANU.paf -o CANU  -l -p 10 -k 5

NECAT的结果

NECAT

CANU的结果

CANU

NECAT和CANU都和参考基因组有着良好的共线性，但是NECAT的连续性更好，几乎成一条直线。

之后，我使用了QUAST来评估Canu，NECAT初步组装，NECAT用Medaka， nanopolish和racon纠错的结果（MD: MEDAKA, RC: RACON, NP:NextPolish）。

quast.py -t 100 --output-dir athaliana --circos \CANU.fa \NECAT.fa \NECAT_MD.fa \NECAT_MD_NP.fa \NECAT_NP.fa \NECAT_RC.fa \NECAT_RC_NP.fa \-r Athaliana.fa  \-g TAIR10_GFF3_genes.gff &

一些描述基本信息

CANU        N50 = 4875070,  L50 = 7, Total length = 114689024, GC % = 36.09 
NECAT       N50 = 11146374, L50 = 5, Total length = 121978724, GC % = 36.50
NECAT_MD    N50 = 11216803, L50 = 5, Total length = 122101599, GC % = 36.54
NECAT_MD_NP N50 = 11405151, L50 = 5, Total length = 124142955, GC % = 36.30
NECAT_NP    N50 = 11399084, L50 = 5, Total length = 124735066, GC % = 36.36
NECAT_RC    N50 = 11212098, L50 = 5, Total length = 122519370, GC % = 36.4
NECAT_RC_NP N50 = 11406553, L50 = 5, Total length = 124618502, GC % = 36.34

在BUSCO完整度上，以embryophyta_odb10作为物种数据库, 其中ONTmin_IT4是发表的文章里的结果, Athalina则是拟南芥的参考基因组，我们以它们的BUSCO值作为参照。

Athalina     : C:98.6%[S:98.0%,D:0.6%],F:0.4%, M:1.0%, n:1375
ONTmin_IT4   : C:98.4%[S:97.7%,D:0.7%],F:0.7%, M:0.9%, n:1375
CANU         : C:22.9%[S:22.8%,D:0.1%],F:20.2%,M:56.9%,n:1375
NECAT        : C:36.6%[S:36.6%,D:0.0%],F:22.9%,M:40.5%,n:1375
NECAT_MEDAKA : C:53.6%[S:53.2%,D:0.4%],F:21.0%,M:25.4%,n:1375
NECAT_RACON  : C:45.3%[S:45.2%,D:0.1%],F:23.1%,M:31.6%,n:1375

二代Polish后的BUSCO结果如下(MD: MEDAKA, RC: RACON, NP:NextPolish)：

Athalina   : C:98.6%[S:98.0%,D:0.6%],F:0.4%,M:1.0%,n:1375
ONTmin_IT4 : C:98.4%[S:97.7%,D:0.7%],F:0.7%,M:0.9%,n:1375
NECAT_NP   : C:98.6%[S:97.9%,D:0.7%],F:0.4%,M:1.0%,n:1375   
NECAT_MD_NP: C:98.7%[S:98.0%,D:0.7%],F:0.4%,M:0.9%,n:1375
NECAT_RC_NP: C:98.5%[S:97.8%,D:0.7%],F:0.4%,M:1.1%,n:1375

从以上这些数据，你可以得到以下几个洞见: