本文主要是介绍Jackson ImmunoResearch蛋白质印迹指南:膜封闭,希望对大家解决编程问题提供一定的参考价值,需要的开发者们随着小编来一起学习吧!
封闭对于防止转移的蛋白质、膜和实验中使用的后续试剂之间的非特异性相互作用至关重要。非特异性结合会产生背景信号,从而干扰结果解释。Jackson ImmunoResearch艾美捷教你如何选择合适的封闭试剂。
封闭试剂的选择取决于蛋白质印迹检测步骤中使用的二抗的种类。
蛋白封闭剂
封闭溶液的蛋白质成分应与被检测的抗原和二抗的种类相容。
牛血清白蛋白 (BSA) 和脱脂奶粉通常用于封闭溶液,因为它们既便宜又容易获得。然而,它们并不总是合适的,并且可能是背景的原因。
当使用针对来自牛或相关物种(如羊驼、山羊、马或绵羊)的抗体的抗体时,应避免使用 BSA 和脱脂奶粉。在许多 BSA 制剂中发现低水平的牛免疫球蛋白 G (IgG)。
建议使用来自标记二抗宿主物种的正常血清作为较佳封闭剂,以避免任何不必要的相互作用。使用前应制备新鲜的血清工作溶液,通常在浸入膜之前在所选缓冲液中稀释至 5% w/v。
缓冲溶液
通常使用 pH 范围高于大多数抗体(pH 范围 7.5-8.5)的等电点 (pI) 的缓冲溶液,例如 Tris 缓冲盐水 (TBS) 或磷酸盐缓冲盐水 (PBS)。如果磷酸化蛋白是印迹的焦点,则不推荐使用 PBS。
这是因为一抗可以与缓冲液中的磷酸盐以及靶蛋白结合。还应考虑缓冲液 pH 值对检测步骤中使用的报告酶(例如碱性磷酸酶)活性的影响。
非离子洗涤剂
非离子去污剂通常包含在蛋白质印迹中使用的缓冲液中。它们可以防止聚集,这本身会导致背景,但也可以绑定到可能导致非特定交互的任何站点。
Tween-20™(通常为 0.1%)通常用作缓冲添加剂。
Jackson ImmunoResearch艾美捷 关于孵化时间和洗涤问题:
应确定实现较佳信噪比所需的最短可能阻塞持续时间。虽然在 4°C 下过夜封闭可能很有吸引力,但过度封闭孵育会导致聚集和细菌生长,这可能会导致背景或干扰可视化。
封闭过程可能需要通过改变组分及其浓度、时间和温度来进行优化,以获得比较低的背景和比较高的信噪比。
值得注意的是,在封闭后用不含其蛋白质成分的缓冲液清洗膜很重要,因为它可以改善一抗对抗原表位的访问。
注意:专有的阻塞解决方案
有几种预配制的封闭溶液可供使用,它们在市场上销售时适用于所有实验条件。情况可能并非总是如此,尽管它们可能足以满足一组条件。重要的是要考虑后续试剂的种类可能会排除使用通用封闭溶液,并且使用标记抗体种类的正常血清可能更可靠。
注意:用 BSA 或牛奶封闭
牛血清白蛋白 (BSA) 和奶粉可能含有牛 IgG。抗羊驼、抗牛、抗山羊、抗马和抗羊抗体会与牛 IgG 发生反应。使用 BSA 或奶粉进行封闭或稀释可能会显着增加背景和/或降低抗体滴度,应避免使用具有这些特异性的抗体;使用标记二抗宿主物种的正常血清 (5% v/v)。如果 BSA 被视为封闭剂,请使用不含 IgG 的试剂以降低背景电位。
Jackson ImmunoResearch艾美捷相关参考方案:
Blancher C. et al. (2001). SDS-PAGE and Western Blotting Techniques. Methods in Molecular Medicine. doi: 10.1385/1-59259- 136-1:145.
Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc. (2017). Western Blotting Troubleshooting Guide! https://www.jacksonimmuno.com/secondary-antibody-resource/technical-tips/western-blot-trouble-shooting/
GE Healthcare. (2011). Western Blotting Principles and Methods. https://www.sigmaaldrich.com/content/dam/sigma-aldrich/docs/Sigma-Aldrich/General_Information/1/ge-western-blotting.pdf
Bass J.J. et al. (2017). An Overview of Technical Considerations for Western Blotting Applications to Physiological Research. Scandinavian Journal of Medicine and Science in Sports. doi: 10.1111/sms.12702
Lewis M. (2018). A Guide to Selecting Control and Blocking Reagents. Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc. https://www.jacksonimmuno.com/secondary-antibody-resource/technical-tips/controls-diluents-blocking/
Kelly M.F. et al. (2016). Antibody Validation. Mater Methods. doi.org/10.13070/mm.en.6.1540
Lewis M. (2018). Cross-Adsorbed Secondary Antibodies and Cross-Reactivity. Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc.https://www.jacksonimmuno.com/secondary-antibody-resource/technical-tips/cross-adsorbed-and-cross-reactivity/
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